隨著研究的深入，人們對γ-GTP的催化功能和分子結構有了更多的瞭解，並發現其在臨床上可作為肝膽疾病的生物標誌，被廣泛應用於肝病及其他臟器疾病的診斷和預後檢測[3-4] 。近年來，由於生物技術發展突飛猛進，生物催化與生物轉化技術在工業生產中逐漸興起，利用γ-GTP製備系列γ-谷氨醯基類化合物的研究已成為生物催化領域的熱點。已有報道利用γ-谷氨醯基化（γ-glutamylization）反應合成了GG-DOPA等多種化合物[5-7]。地衣芽孢桿菌所產生的γ-GTP在25~35 ℃的溫度範圍有較好的穩定性，在50 ℃的溫度下儲存20 min酶活力基本喪失，這為進一步利用該酶轉化生產茶氨酸時的溫度條件提供了依據。該酶對酸性環境無耐受性，適宜在鹼性條件下儲存，在pH低於11的鹼性條件下儲存30 min，酶活力基本無損失。利用γ-GTP生產茶氨酸需要反應體系pH 為10[9]，而該酶在此pH下比較穩定，說明地衣芽孢桿菌所產生的 γ-GTP適合於酶法轉化生產茶氨酸。
1材料與方法
1.1主要材料與試劑
菌種：地衣芽孢桿菌（Bacillus licheniformis）由本實驗室篩選獲得。試劑：Tris 購自北京普博欣生物公司；L-γ-谷氨醯對硝基苯胺、雙甘肽均購自廣州威佳科技有限公司；硫酸銨為國產分析純。
1.2地衣芽孢桿菌的產酶發酵
用接種環在活化好的菌種斜面上刮下一環菌種，將其轉入到種子培養基，30 ℃、240 r/min搖床振盪培養16 h。以20%接種量轉接於發酵培養基（30 mL發酵液/300 mL三角瓶）中，在30 ℃下240 r/min搖床培養28 h後收集菌體。
1.3γ-GTP粗酶的製備
γ-GTP發酵瓶培養液離心（4 800 r/min,10 min），棄上清液，用TE緩衝液（Tri-HCl 緩衝液，pH 8.0，10 mol/L）重懸菌體，採用溶菌酶法以及硫酸銨鹽析法制備粗酶液。
1.4酶對溫度的耐受性
以TE pH8.0為緩衝液，不同溫度下儲存20 min，測定酶活力[1]。
1.5酶對pH的耐受性
pH2.0採用Na2HP04檸檬酸緩衝液； pH4.0、pH5.0採用NaAc-HAc緩衝液；pH7.0採用磷酸鹽緩衝液；pH8.0、pH9.0採用Tris-HCl緩衝液；pH11?0、pH13.0採用甘氨酸-NaOH緩衝液；在25 ℃下儲存30 min，測定酶活力。
1.6酶的最適反應溫度
以TE pH8.0為緩衝液，分別在不同溫度下測定酶活力。
1.7酶的最適反應pH
pH2.0採用Na2HP04-檸檬酸緩衝液； pH4.0、pH5.0採用NaAc-HAc緩衝液；pH7.0採用磷酸鹽緩衝液；pH8.0、pH9.0採用Tris-HCl緩衝液；pH11?0、pH13.0採用甘氨酸-NaOH緩衝液，採用酶活測試方法檢測酶活力。
1.8金屬離子對酶活力的影響
在反應體系中分別加入各種金屬離子，終濃度均為5 mmol/L，採用酶活測試方法檢測酶活力。
2結果
在一般情況下，適合的金屬離子及適合的濃度會對酶的催化活性產生促進作用，但如果反應體系中金屬離子濃度過高，反而會對酶蛋白產生毒害作用。為此，可選擇對γ-GTP影響較大的鎂離子研究濃度與酶活力的關係。
Mg2+濃度對酶活力的影響比較顯著。在低於3.0 mmol/L的`濃度範圍內，酶活力隨著Mg2+濃度的增加而增高，當濃度達到3.0 mmol/L時酶活力最高，此後，酶活力隨著Mg2+濃度上升而緩慢下降。由此可見，在圖5所涉及的金屬離子（除亞錫離子外）雖然在5 mmol/L的濃度下對酶活力均有促進作用，但在不同濃度下有些金屬離子也會對酶起到抑制作用。
在反應體系中加入5 mmol/L的各種金屬離子除亞錫離子外均會對酶的活力有促進作用。但在金屬離子中，一價金屬離子鉀離子和鈉離子以及三價金屬離子鐵離子和鋁離子的加入對酶的促進作用明顯低於二價金屬離子錳離子、鈣離子和鎂離子。另外，新增重金屬離子亞錫離子由於會引起蛋白質的變性，致使酶活力消失；有的金屬離子如錳離子、鎂離子等可較大程度的提高酶活力，這可能是由於這些金屬離子會對γ-GTP的活性中心產生影響的緣故。
